染色是利用染料在组织切片上给予颜色，使其与组织或细胞内的某种成分发生作用，经过透明后通过光谱吸收和折射，使其各种微细结构能显现不一样的颜色，这样在显微镜下就可显示出组织细胞的各种成分，便于进行形态学诊断和研究。用作配制染液的原料称为染料。苏木素和伊红是病理学制片最广泛应用的普通染料，故称常规染色，取苏木素（hematoxylin）和伊红（eosin）两个英文字头而简称HE染色。HE染色大多数都用在显示各种组织正常成分和病变的一般形态结构。其他化学染色方法习惯上为特殊染色。

  经典的配制方法：先将甲液加热溶解后，密封待用，再将乙液加热溶解至沸去火，待溶液仍处于小沸腾状态时再将甲液徐徐倾入其中，全部混合后，再使溶液在短时间内加热至沸腾去火，最后，将氧化汞缓慢倾入溶液中（氧化汞一定要慢慢少量分次加入，切忌急躁。因氧化汞倒入后，溶液会迅速膨胀易沸出容器外而发生危险。）此时液体变为深紫色，待氧化汞全部放入后，再将溶液加温至沸腾片刻，立即将溶液放入流动的冷水中，并缓缓地连续摇晃至溶液完全冷却为止。隔夜后过滤，加入冰醋酸20ml混匀，再过滤后保存于冰箱内备用。

  配制方法：先将甲液加热溶解，然后将乙液加热溶解，将甲、乙两液混合。再将丙液溶解后缓缓滴入，待全部混合后，再次煮沸一分钟，冷却后过滤，即可使用。

  配制方法：将苏木素溶于无水乙醇，再将钾明矾溶于蒸馏水中，溶解后将甘油倾入混合，然后加入苏木素乙醇混合，最后加人冰醋酸，溶液全部混合后，应暴露在日光下使其自然氧化成熟，时间约要三个月。（若加人0.3 g碘酸钠，使苏木素迅速氧化则可立即使用。）此液贮存愈久染色力愈强。（可保持数年之久）染色时间5-20分钟，结果甚佳。主要使用在一般染色和粘液、骨组织的染色。

  配制方法：先将苏木素溶于乙醇，再将甲液混合在乙液中，置于白色瓶中并暴露在阳光下约一周，然后过滤，将丙液加入滤液中，待溶液呈暗灰色时再过滤，滤液密封保存。主要使用在于一般染色、弹力纤维的染色。

  5.Mayer氏明矾苏木素液苏木素0.1g，钾明矾5g，碘酸钠0.02g，拘椽酸0.1g，水合氯醛5g，蒸馏水100ml。

  配制方法：先将苏木素及水煮沸溶解，加入钾明矾与碘酸钠，搅动直到全部溶解为止。再加入水合氯醛和拘椽酸，完全溶解后染液呈蓝紫色。加热煮沸五分钟，冷却后过滤即成。 此染液染切片5——15分钟，不需分化，充分水洗后，可使细胞核显蓝色并且非常细致清晰，通常用于对比染色。主要使用在于一般染色、骨组织染色及免疫组化染色。

  配制方法：临用时，取甲、乙液等量混合即可应用。混合时应将乙液加人甲液内，染液呈紫黑色。铁苏木素不能象明矾苏木素一样配制后可放置贮存备用，因铁与染色剂的色素根会化合生成不溶性沉淀，所以铁作媒染液时，必须与染液分别配制和分别保存，染片时临时混合应用。由于这是一种铁苏木素，它将胞核染成黑色。能抵抗在对比染色液中所含分色剂的脱色作用，且不会被光线退色，因此比明矾苏木素染色较为持久。

  配制方法：将苏木素于20毫升蒸馏水中加热溶解，再将磷钨酸溶于80毫升蒸馏水。苏木素液冷却后加入磷钨酸溶液中混合，置放于有阳光处数星期至数月才成熟。此液可久放，若急用时可加入0.177g高锰酸钾促其成熟。 该染色剂对神经组织及纤维素是一种较理想的染色剂。

  8.Mallory磷钼酸苏木素液苏木素1g，10％磷钼酸水溶液10ml，水合三氯乙醛6-10g，蒸馏水100ml。

  配制方法：暴露于阳光下氧化一周，用时过滤。此染色剂大多数都用在中枢神经系统的染色。

  配制方法：将苏木素溶于乙醇稍加温。钾明矾溶于蒸馏水，两液混合置烧杯或广口瓶中，以纱布或棉花封盖，在阳光下约l-2个月自然成熟的苏木素液面可见一层金属膜样物。组织切片染色用5-10min，以盐酸乙醇分化。

  伊红为砖红色粉末状或酱红色结晶，是最常用的胞浆染料。又名为曙红，它是萤光黄的四溴衍生物。曙红本身溶于醇而不溶于水，也称为醇溶性伊红，它的钠盐、钾盐或铵盐可溶于水，因此称为水溶性伊红。

  配制方法：先取少许蒸馏水加入伊红，用玻璃棒将伊红研碎，再加入全部蒸馏水。

  配制方法：先取少许80%乙醇加入伊红，用玻璃棒将伊红研碎，然后，再加入全部80%乙醇在搅拌器上搅拌溶解。若在伊红液中加人0.5毫升冰醋酸，可加速其染色过程，并使胞浆的色泽更为艳丽。

  1.1％盐酸乙醇溶液：是最常用的分化液。70％乙醇99ml，盐酸1ml配制而成。

  1.氢氧化胺水溶液浓氨水1ml，蒸馏水99ml，pH值调至7.5-8.0。

  结果细胞核被苏木素染为蓝色，细胞浆、肌纤维、胶原纤维、红细胞被伊红染成不同程度的红色。

  制作出优质的HE染色切片，绝非仅指染色而言，它包括很多方面，首先应重视“固定”环节，其次注意脱水、透明、组织浸蜡、包埋和切片等各个步骤。因固定、脱水等步骤有所缺陷的切片，染色是不可能鲜艳、透明、层次分明的。解决上述各细节问题的方法已在前面各章节中均提到过。但在进行HE染色时还应注意以下问题：

  1.组织切片的脱蜡步骤应彻底，否则无论进行那种染色都可能会发生困难。脱蜡时间要充分，若溶蜡剂使用过久应按时换以免效率降低，若室温过低，必须将切片放置温箱中预热（使切片上的石蜡熔化），或可将溶蜡剂置于温箱中进行脱蜡。

  2.苏木素染液使用一段时间后表面易出现亮晶状飘浮物，这可能是液体表面的过氧化物，因此，在每次染苏木素之前应该过滤或用纸把液面上的氧化膜拖走，以免污染切片。 苏木素染色后，不宜在水中停留较长时间，防止染色质变蓝后，而不易用盐酸乙醇分化。苏木素液一般染过三、四百张切片后，着色力会减弱，着色不鲜艳，呈灰蓝色时应按时换新液。

  3.染色的时间长短需根据染剂对组织的染色作用、室温条件、切片厚薄、固定液的类别、染液的新旧而进行调节。所以在染色时一定要使用显微镜观察染色程度以利掌握时间。

  4.分化十分重要。染色时将苏木精先适当过染，再经盐酸乙醇脱去胞质之苏木素颜色和核内多余的染液的过程叫分化。分化步骤的准确也是染色成败的关键，分化处理恰当，即核的颜色达到适宜程度，应立即终止分化，盐酸乙醇分化，必须严格掌握时间，不同的组织、切片厚度和苏木素染色深浅来决定分化时间。一般是2-3s,当过染切片由深蓝色变成红色至粉红色时，立即将切片置入自来水中终止分化（可经光学显微镜下观察胞核是否清晰，胞浆呈淡白色）。如过染的切片分化过度时核呈褪色状，颜色灰淡，仅能看出轮廓甚至模糊不清；分化不足时则胞核过深，使核浆的境界不清，不能辨认出核膜及染色质的形态结构特点，细胞质背景仍有浅蓝色，这样经伊红染色后，细胞质称红紫色。

  5.苏木素过染后经盐酸乙醇分化后呈红紫色，粉红色，再用弱碱性水溶液处理，使其由浅色变成鲜艳的蓝色，称为返蓝。返蓝除碳酸锂饱和溶液外，尚可用氨水，如染色不受时间限制，最好用弱碱性流水返蓝，冲洗数小时，使核的染色更佳。返蓝液不宜过浓，若碱性太强易使组织脱落故以淡为宜。

  6.伊红宜淡染，复染过深胞核不清晰。 新配制的伊红浸染1-2min即可。伊红染色时间、染色液浸染程度应以苏木素对核着色程度为参照标准，以求达到对比鲜明，当胞核过淡而胞质过红时造成以红盖蓝，反之核过浓染而胞质过淡均影响观察。因此要对比色彩相适宜为佳。

  7.若脱水、透明等步骤不够彻底，则组织表面会有一层雾状膜。若有这一现象，应立即更换无水乙醇脱水，再次透明。在潮湿的季节里应注意乙醇的浓度，若降低要及时更换。

  8.封固剂要适量，滴加时应小心倾滴，滴加的中性树胶不宜太多，以免加盖玻片后外溢，也不要太少，以免加上盖玻片后封盖不佳，影响切片保存。中性树胶浓度应适宜，过稀容易溢出玻片，当树胶内的二甲苯挥发后，树胶干燥浓缩后产生气泡，中性树胶过浓稠，滴后不易扩散，如有气泡产生，可轻轻加压驱除。或返回二甲苯内小心取下盖玻片重新封固。盖玻片大小选择要合适，一般要大于组织块，以防封盖不全，标签贴牢，编号清楚。

  9.染好的切片应妥为保存，登记归档，按顺序分类，避免日光照射，否则切片容易褪色。

  10.有时为缩短某些程度的染色时间，通常可用加热的方法来实现。一般是将切片或涂片浸在染色液内，连同染色皿置于37℃或56℃温箱内至所需时间。